المرجع الالكتروني للمعلوماتية
المرجع الألكتروني للمعلوماتية

علم الاحياء
عدد المواضيع في هذا القسم 10456 موضوعاً
النبات
الحيوان
الأحياء المجهرية
علم الأمراض
التقانة الإحيائية
التقنية الحياتية النانوية
علم الأجنة
الأحياء الجزيئي
علم وظائف الأعضاء
المضادات الحيوية

Untitled Document
أبحث عن شيء أخر
{وان هذا صراطي‏ مستقيما فاتبعوه ولا تتبعوا السبل}
2024-05-15
{ولا تقربوا مال اليتيم الا بالتي‏ هي احسن}
2024-05-15
{قل تعالوا اتل ما حرم ربكم عليكم}
2024-05-15
{قل هلم شهداءكم}
2024-05-15
معنى الخرص
2024-05-15
معنى الشحوم و الحوايا
2024-05-15

الأفعال التي تنصب مفعولين
23-12-2014
صيغ المبالغة
18-02-2015
الجملة الإنشائية وأقسامها
26-03-2015
اولاد الامام الحسين (عليه السلام)
3-04-2015
معاني صيغ الزيادة
17-02-2015
انواع التمور في العراق
27-5-2016

Plate count method APHA 2001 for heat resistant molds in foods  
  
2281   01:42 صباحاً   date: 22-3-2016
Author : SILVA, N.D .; TANIWAKI, M.H. ; JUNQUEIRA, V.C.A.; SILVEIRA, N.F.A. , NASCIMENTO , M.D.D. and GOMES ,R.A.R
Book or Source : MICROBIOLOGICAL EXAMINATION METHODS OF FOOD AND WATE A Laboratory Manual
Page and Part :


Read More
Date: 17-11-2015 2240
Date: 17-11-2015 1603
Date: 17-11-2015 1736

Plate count method APHA 2001 for heat resistant molds in foods

 

Method of the American Public Health Association (APHA), as described in 4th Edition of the  Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods (Beuchat and Pitt, 2001).

1 - Material required for analysis

•  Sterile distilled water or equivalent

•  1.5 strength Potato Dextrose Agar (PDA) with antibiotics or 1.5 strength Malt Extract Agar (MEA) with antibiotics

•  Water bath (closed) set to 75–80°C

•  Laboratory incubator set to 30±1°C

2- Procedure

A general flowchart for the enumeration of heat-resist-ant molds in foods using the plate count method APHA 2001 is shown in Figure 1.

Attention: All the steps of the analysis of heat-resist-ant molds must be carried out in a laminar flow cabinet to avoid accidental contamination of the samples by molds from the environment.

a) Heat shock

a.1)  For the analysis of fruits or pulps containing pieces of fruit(s), weigh 100 g of the sample in a sterile plastic bag, add 100 ml of sterile distilled water and homogenize in a stomacher for 2–4 min. After homogenization, transfer two portions of 50 ml to 200 × 30 mm tubes and place the tubes in a closed, temperature-controlled water bath set at a temperature between 75 and 80°C. Keep in the bath for 30 min, making sure that the surface of the product remains below the sur-face of the water in the bath.

a.2) For the analysis of non-concentrated fruit juices (Brix  <  35°), transfer three 50 ml-portions of the sample to 200 × 30 mm tubes and use one of the tubes to adjust the pH to 3.4–3.6, with 10% NaOH (if the pH of the sample is higher than 3.4–3.6 the pH adjustment is not necessary). Record the volume of NaOH consumed to adjust the pH and aseptically add an equal amount of sterile 10% NaOH to the two other tubes. Discard the first tube and transfer the two other tubes to a closed, temperature-controlled water bath set at 75–80°C. Keep in the bath for 30 min, making sure that the surface of the product remains below the surface of the water in the bath.

a.3) For the analysis of concentrated fruit

juices (Brix > 35°), weigh 100 g of the sample in a sterile plastic bag, add 200 ml sterile distilled water and homogenize in a stomacher. After the homogenization, transfer three 50 ml-portions to 200 × 30 mm tubes, adjust the pH and proceed with the analysis in exactly the same way as described for non-concentrated juices. If the pH of the sample is higher than 3.4–3.6 the pH adjustment is not necessary.

b) Inoculation: Divide each 50 ml portions over four large Petri dishes (150 mm in diameter). Add to each plate 10 ml of 1.5 strength  Potato Dextrose Agar (PDA) with antibiotics or 1.5 strength  Malt Extract Agar (MEA) with antibiotics. Mix the sample well with the culture medium and wait until solidification is complete.

 Note b.1)  Pitt and Hocking (2009) describe the following alternative procedure: Weigh two portions of 50 g of the sample in stomacher bags or in 250 ml Erlenmeyer flasks. Samples with a Brix value greater than 35° should be diluted with 0.1% peptone water to a 1:1 ratio. Samples that are very acidic should have their pH adjusted to 3.5 to 4.0 with 10% NaOH. Subject the sample to heat shock in a hot water bath at 80°C/30 min. After heat shock, mix each 50 ml-portion of the sample with 50 ml of double strength  Malt Extract Agar (MEA) with antibiotics or double strength  Potato Dextrose Agar (PDA) with antibiotic, previously melted and cooled to 50–60°C. Homogenize well and distribute over five sterile, empty Petri plates and wait until solidification is complete. Incubate the plates at 30ºC for 30 days, examining visually every week.

c) Incubation:  Transfer the plates to a sterile plastic bag, seal the bag well, to prevent the culture medium from drying out and incubate at 30ºC for up to 30 days, visually examining the plates every week. The majority of the viable spores will normally germinate and form visible colonies within 7–10 days. Heat-injured spores may require an

Figure 1   Scheme of analysis for enumeration of heat-resistant molds in foods using the plate count method APHA 2001 (Beuchat and Pitt, 2001).

additional period of time before they start to develop colonies.

d)  Calculating the results:  Count the colonies that developed on all the plates and calculate the result as number of spores/100 g or ml.

 

References

Silva, N.D .; Taniwaki, M.H. ; Junqueira, V.C.A.;  Silveira, N.F.A. , Nasdcimento , M.D.D. and Gomes ,R.A.R .(2013) . Microbiological examination methods of food and water a laboratory Manual. Institute of Food Technology – ITAL, Campinas, SP, Brazil .

Beuchat, L.R. & Cousin, M.A. (2001) Yeasts and molds. In: Downes, F.P. & Ito, K. (eds).  Compendium of Methods for the Microbio-logical Examination of Foods. 4th edition. Washington, American Public Health Association. Chapter 20, pp. 209–215.

Pitt, J.I. & Hocking, A.D. (eds) (2009) Fungi and Food Spoilage. 3rd edition. London, Springer.

 




علم الأحياء المجهرية هو العلم الذي يختص بدراسة الأحياء الدقيقة من حيث الحجم والتي لا يمكن مشاهدتها بالعين المجرَّدة. اذ يتعامل مع الأشكال المجهرية من حيث طرق تكاثرها، ووظائف أجزائها ومكوناتها المختلفة، دورها في الطبيعة، والعلاقة المفيدة أو الضارة مع الكائنات الحية - ومنها الإنسان بشكل خاص - كما يدرس استعمالات هذه الكائنات في الصناعة والعلم. وتنقسم هذه الكائنات الدقيقة إلى: بكتيريا وفيروسات وفطريات وطفيليات.



يقوم علم الأحياء الجزيئي بدراسة الأحياء على المستوى الجزيئي، لذلك فهو يتداخل مع كلا من علم الأحياء والكيمياء وبشكل خاص مع علم الكيمياء الحيوية وعلم الوراثة في عدة مناطق وتخصصات. يهتم علم الاحياء الجزيئي بدراسة مختلف العلاقات المتبادلة بين كافة الأنظمة الخلوية وبخاصة العلاقات بين الدنا (DNA) والرنا (RNA) وعملية تصنيع البروتينات إضافة إلى آليات تنظيم هذه العملية وكافة العمليات الحيوية.



علم الوراثة هو أحد فروع علوم الحياة الحديثة الذي يبحث في أسباب التشابه والاختلاف في صفات الأجيال المتعاقبة من الأفراد التي ترتبط فيما بينها بصلة عضوية معينة كما يبحث فيما يؤدي اليه تلك الأسباب من نتائج مع إعطاء تفسير للمسببات ونتائجها. وعلى هذا الأساس فإن دراسة هذا العلم تتطلب الماماً واسعاً وقاعدة راسخة عميقة في شتى مجالات علوم الحياة كعلم الخلية وعلم الهيأة وعلم الأجنة وعلم البيئة والتصنيف والزراعة والطب وعلم البكتريا.




شعبة التوجيه الديني النسوي تختتم دورة تعليم مناسك الحج
العتبتان المقدستان العلوية والعباسية تبحثان تعزيز التعاون في مجال خدمة الزائرين
منها الشبابيك والأبواب.. أعمال فنيّة عدّة ينفذها قسم الصناعات والحرف
قسم شؤون المعارف يصدر العدد الخامس عشر من مجلة تراث البصرة